1 基本原理及主要參數
了解生化分析儀基本參數的原理，有利于儀器、試劑的正確使用，有助于正確分析和處理測定數據。生化分析儀根據自動化程度分半自動和全自動，從目前試劑盒供應情況來看，主要的測定方法為：終點法(包括一點終點法和兩點終點法)、速率法(連續檢測法)、速率兩點法(兩點法)，后兩種統稱動力學法。
2 主要參數設置的技巧
2．1 方法類型可根據試劑盒要求或反應原理來設置。對于半自動生化分析儀終點法只是一點終點法，全自動生化儀單試劑選擇一點終點法，而雙試劑選擇兩點終點法。大多數酶學測定使用速率法，尿素氮、肌酐測定等用兩點法。
2．2 測定波長測定波長選擇有三個主要條件：(1)待測物質在該波長下的光吸收最大。(2)其吸收峰宜較寬而鈍，(3)常見干擾物在該波長下的光吸收最小。試劑盒說明一般已提供波長參數。有些儀器波長選擇受濾光片數量限制，應該就近選擇為原則。
2．3 測定溫度一般全自動生化儀都是37℃ ，而半自動生化儀有室溫、25~C、30cc、37~C等，終點法由于反應在機外進行，選擇室溫可以減少儀器溫度調整時間，提高工作效率，而速率法和兩點法都選擇37℃比較合適。
2．4 樣本體積分數樣品體積分數即樣品體積與反應液總體積的比值(sv／TV)。酶活力測定中，樣品在總體積中的比例應在10％以下。一般來說，待測物質在樣品中含量低的、生理波動范圍大的，樣品用量較大。如Trinder反應測定血清葡萄糖、膽固醇等，樣品試劑比例多為1：100，測定血尿酸或高密度脂蛋白膽固醇，常增加為1：50；AIJT和AST的樣品試劑比例多為1：10至1：20。方法靈敏、吸光度高的實驗方法，樣品試劑比例小，如白蛋白BCG法，樣品試劑比例常為1：200。肌酐Jaffe氏法監測時間短、吸光度值較低，樣品試劑比例多為l：10。一般應以試劑說明為準，不宜輕易改動。可根據最終反應液的量來計算樣本量和試劑量。
2．5 吸液量主要是針對流動比色的全自動或半自動儀器的參數，原則是吸人量不得大于或等于反應液總體積，否則會導致吸空形成比色池氣泡，最好留100～200ul的余地。
2．6 延遲時間延遲時間(Delay Time)指試劑與樣品混合后到監測開始之間的時間。延遲時間的選擇取決于被測物質的濃度(酶的活性)大小、反應速度的快慢、酶促反應的級數、樣品中干擾物消除所需的時間等。比如：CHE活性高僅需20— 30秒，LDH一級反應需30～40秒，AIJT需40～6O秒，AST需60～75秒，CK需90～120秒。半自動生化儀上酶活性連續監測法的延遲時間設定，由于只能單份樣品逐一測定，若延遲時問全部設置在儀器內，每個延遲時間加監測時間至少1分鐘以上，守候時間較長。工作量大時，可以根據儀器控溫、加樣及讀數和試劑特點，以及室溫情況，將延遲時問挪一部分到機外，套式操作，但要確保機內延遲時間不要進入線性反應期。兼顧延遲時間和監測時間反應時間是有限制的。在速率法和兩點法中，延長延遲時間必然縮短線性監測期，減少測定的線性范圍，也易發生底物耗盡。
2．7 監測時間 酶促反應延遲期后，在過量底物的存在下，反應速率加快并達到一個反應速率穩定的階段，即酶促反應以恒定的速率進行，不受底物濃度的影響，這段時間稱為線性反應期或零級反應期，自動化生化分析儀的監測時間即為此期。測酶的連續監測法至少90—120s或至少4點(3個AA)，少于3個△A不能稱為連續監測法，因為不能計算線性度。監測時間過長則容易發生底物耗盡，可測范圍變窄。
2．8 標準液濃度終點法和兩點法必須設置標準，選擇合格的標準品很重要。有些試劑盒配有標準液，但是部分項目標準液定標偏差太大，我們使用的是干粉復合羅氏校準液，復溶后分裝冷凍保存，只要復溶的水質保證，避免反復凍融，校準的結果還是很滿意的。注意校準液靶值獲得的方法學，方法不同耙值是有差異的，比較典型的是ALP測定有IFCC和DGKC法，差異比較大，不可簡單套用。2．9 K值速率法測定無需帶標準或做標準曲線，首先確定樣本量和工作試劑量，再根據被測物質的摩爾消光系數，就
可按速率法計算公式計算出因素K值了。K=TV×10。／(8×SV XL)，TV為反應液總體積，sV為樣本體積，L為比色杯光徑(em)，￡為毫摩爾消光系數，如NADH／NADPH34Onm為6．22，對硝基苯胺405nm為9．9，5一氨基一2一硝基苯甲酸405rim為9．5，對硝基酚405nm為10．5，5一硫代一2一硝基苯甲酸405nm為13．3。
2．10 試劑吸光度上下限有的生化儀要求設置試劑吸光度上下限，主要是用來監測試劑的質量的，但是試劑吸光度上限和下限不是試劑質量的唯一指針。因此，一定的校準頻率和室內質控是質量保證的必需手段。我們在實際工作中就遇到酶活力測定的試劑空白數據在規定限值內，但質控物測定結果連續偏低，病人結果因每天標本少而難以判斷，最后發現是試劑質量下降。