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【兆恒機械】組織免疫熒光應該怎么做?

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  • 添加日期:2022年08月11日

組織的免疫熒光之所以難做,是因為組織會有自發熒光,會干擾我們的實驗,尤其想在組織上做磷酸化的免疫熒光那更是難上加難。這次主要講組織的免疫熒光。

做組織的免疫熒光我做過的和知道的有兩種方法,一種是選用冰凍切片的組織,一種是選用石蠟包埋的組織。兩種方法各有優缺點。image.png

所以,石蠟切片的片子需要做抗原修復,需要在檸檬酸鹽緩沖液中煮30 min,這樣更有效的去除醛類固定試劑導致的蛋白之間的交聯,充分暴露石蠟切片樣品中的抗原表位,從而大大改善免疫熒光染色。

在正式做熒光之前,片子的準備程序如下。(藍色為石蠟切片,紫色為冰凍切片)


image.png

石蠟切片

  • 1.4%多聚甲醛4℃固定過夜;

  • 2.1xPBS洗一次,30min;

  • 3.30%乙醇1小時,搖床上慢搖,下同;

  • 4.50%乙醇1小時;

  • 5.70%乙醇1小時;

  • 6.85%乙醇1小時;

  • 7.95%乙醇1小時;

  • 8.正丁醇1小時(打開65℃溫箱溶蠟);

  • 9.石蠟65℃中處理3小時,每隔1小時換石蠟一次,包埋。

  • 10.切片

冰凍切片

  • 1.4%多聚甲醛冰上固定2小時;

  • 2.1xPBS洗一次,5min;

  • 3.30%蔗糖沉降2小時;

  • 4.OCT包埋。

組織和細胞一樣有些常用的固定液。根據Bencroft的分類法,可分為四類:

  • Ⅰ類:醛類,甲醛,戊二醛,多聚甲醛,丙烯醛,已二醛,丙二醛等。

  • Ⅱ類:氧化劑類,四氧化鋨(奧酸),高錳酸鉀,重鉻酸鉀等。

  • Ⅲ類:蛋白變性類,甲醇,乙醇,醋酸等。

  • Ⅳ類:其他,氯化汞,苦味酸等。
    最常使用的是甲醛和多聚甲醛,其余的也在其它病理技術方面中用到,做比如電鏡的固定劑一般用2.5%戊二醛固定。

而對于常用的甲醛及多聚甲醛固定液,各個的優缺點還是有些不一樣的。

  • 10%甲醛:對組織滲透性強,固定均勻。對組織收縮少。對脂肪、神經及髓鞘、糖等固定效果好,是最常用的固定劑。但經酒精脫水時有較大的收縮。能保存脂肪,不能沉淀核蛋白及白蛋白,長期用其固定的組織使組織變為酸性,不利于染色,特別是細胞核的著色。經自來水沖洗6~24小時后,可以使其酸堿中和,并減少結晶。

  • 4%多聚甲醛:對組織穿透性好,組織收縮小,對大多數抗原物質保存較好,特別是對脂肪和各種酶的固定效果更好。固定的時間不宜太長,以24小時以內為宜,適用于免疫組織化學染色。
    我自己做的比較多的是石蠟切片的。先給大家看看我們課題組做的石蠟切片的肺組織免疫熒光。

    image.png

下面是石蠟切片的免疫熒光步驟


image.png
(左邊為切片機,右邊為漂片機)


  • 1.先檢查切片機各部位是否已固定,刀片是否鋒利(最好用新的刀片)

  • 2.切片時要注意速度,太快易出現褶皺,這里可以先將樣品置于冰上冷卻哈;

  • 3.切片時發現縱向刀痕時要停止切片,清除刀片上的那些碎屑;

  • 4.展片水溫控制在42℃左右,過高蠟片彌散,過低蠟片不能展開;

  • 5.新換的水需要先將水加熱到42度才能放入切片,否則水溫上升后易出現微小氣泡,影響貼片;

  • 6.展片槽水位應較高,防止玻片觸底帶起氣泡,貼附于蠟片下影響貼片;

  • 7.展片時間要適中,過短則蠟片不能完全展開,過長則蠟片彌散,不利于貼片;

  • 8.可用普通載玻片展片;

  • 9.切片樣品置于切片盒中敞開晾干后室溫保存一段時間,我最長是兩個月。建議長期保存還是放入蠟塊中。
    因為最近沒有做相關的實驗,所以沒有拍圖片,下次做的時候補上。

  • 10.抗原修復:將切片置于0.1mol/L且Ph=6的枸櫞酸液修復液中,微波爐中火加熱6分鐘至微微沸騰,再用中低火力維持10分鐘,停止加熱后自然冷卻20-30分鐘(直接煮沸6分鐘×4次)。

  • 11.PBS浸洗2分鐘X2次后,加0.2%tritonX-100透膜15分鐘(如果你切片比較薄的話,也可不透膜,反正細胞已經被切開)。但如果是做細胞膜表面的蛋白,那就不要透膜了。

  • 12.PBS 2分鐘清洗2次。

  • 13.用濾紙擦去標本外的PBS,滴加封閉血清(最好選用二抗同來源的血清,二抗一般來自山羊,所以可以選用山羊血清。)在濕盒中室溫封閉1h。

  • 14.用濾紙擦去封閉液,PBS清洗兩次。

  • 15.滴加適宜濃度的一抗置濕盒中4℃孵育過夜。

  • 16.濾紙吸去一抗,或者回收一抗。

  • 17.PBS 3分鐘×5次,用濾紙擦去標本外的PBS。

  • 18.滴加熒光二抗室溫置濕盒中避光孵育1小時,此時可在熒光顯微鏡下迅速觀察是否染上,以確定終止時間。

  • 19.用PBS 3分鐘×3次洗去二抗,用濾紙擦去標本外的PBS。

  • 20.滴加 DAPI避光孵育15分鐘。

  • 21.用PBS 5分鐘×2次,用濾紙擦去標本外的PBS。

  • 22.用含抗熒光淬滅劑的封片,37度烘干保存。

冰凍切片


image.png
冰凍切片機


注意事項:

  • 1.樣品提前兩小時從液氮中放在-20℃平衡樣品溫度;

  • 2.冰凍包埋OCT液于室溫呈液態,-15℃以下呈固態,如不馬上切片,保存于-80度冰箱待用;

  • 3.載玻片應置于室溫,若長時間置于-20℃則組織將不能貼附;

  • 4.切片:切片厚度40um,切片直接放在室溫的PBS中,OCT會自動溶解于PBS中;

  • 5.封閉過氧化物酶體:3%H2O2,(1mL 30%H2O2 +9ml 甲醇);

  • 6.PBS 5分鐘X3次;

  • 7.高溫抗原修復:95度水浴,檸檬酸鹽(PH=6.0)修復液,6min。結束后放置20-30min使溫度降低;(此步驟可選用,有相熟的同學做的時候用了這一步,結果也挺好的);

  • 8.PBS 5分鐘X3次;

  • 9.透膜,0.2%Triton 室溫20 分鐘;

  • 10.封閉:10%山羊血清,1h;

  • 11.一抗孵育4度過夜;

  • 12.PBS 5分鐘X3次;

  • 13.孵育二抗,室溫1h;

  • 14.PBS 5分鐘X3次;

  • 15.滴加 DAPI避光孵育15分鐘。

  • 16.用PBS 5分鐘×2次,用濾紙擦去標本外的PBS。

  • 17.用含抗熒光淬滅劑的封片,37度烘干保存。


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